histologi er studiet af humant væv. Dette udtryk består af to udtryk fra det græske og det latinske sprog. "Histos" betyder "væv" på græsk og "logoer" betyder "undervisning" på latin.
Hvad er histologien?
I histologi bruger læger tekniske hjælpemidler såsom et lysmikroskop til at identificere strukturen i forskellige strukturer.
Den mikroskopiske anatomi opdeler organerne i henhold til deres komponenter, som bliver mindre og mindre, jo dybere undersøgelserne går i de forskellige strukturer. Områderne med tidlig diagnose, patologi, anatomi og biologi beskæftiger sig hovedsageligt med dette medicinske felt.
Behandlinger og behandlingsformer
Den mikroskopiske anatomi opdeler organerne i tre grupper efter deres størrelse og komponenter. Histologi som undersøgelse af humant væv er en vigtig komponent i biologi, medicin, anatomi og patologi.
Cytologi går dybere ind i de menneskelige vævslag og beskæftiger sig med celleteori og funktionel sammensætning. Molekylærbiologi er dedikeret til de mindste komponenter i humane celler, molekylerne, der også er kendt som partikler. Histologiens vigtigste opgave er den tidlige diagnose af tumorer. Ved hjælp af de fineste undersøgelsesmetoder finder lægerne ud af, om der er patologiske ændringer, dvs. ondartede tumorer, eller om vævet stadig er sundt og tumorer er godartede. Desuden er histologerne i stand til at påvise bakterielle, parasitære og inflammatoriske sygdomme såvel som metaboliske sygdomme.
Vævsteorien danner også udgangspunktet for senere terapeutiske tilgange baseret på de histologiske fund. Histologer og patologer bruger histologi til at gøre "små ting store eller synlige". En del af det syge væv fjernes fra patienten med en prøveudskæring (biopsi). Denne vævsprøve undersøges derefter af en patolog ved at fremstille mikrometer-tynde skæremønstre. I det næste trin farves disse mønstre og ses under lysmikroskopet. Undertiden bruges også et højopløsnings-elektronmikroskop, men det bruges hovedsageligt til forskning. Før undersøgelsen behandler histoteknologi, hvordan vævet behandles. En medicinsk teknisk assistent (MTA) er ansvarlig for dette trin. Det fikser vævet for at opnå stabilisering.
Assistenten ser på det skårne væv makroskopisk (med øjet), dræner det og imprægnerer det i flydende paraffin. Vævsprøven blokeres derefter i paraffin, og i det næste trin foretages et snit med en diameter på 2 til 5 um. Dette er fastgjort til glideskinne og farvet. Den rutinemæssige teknik er fremstillingen af et FFBE-præparat, et "formalin-fast paraffinindlejret væv". Vævsprøven er farvet i et hæmatoxylin-eosin. Denne proces tager en dag eller to fra det første til det sidste trin. En hurtig sektionundersøgelse er en mindre tidskrævende vævsundersøgelse. Dette gøres altid, når kirurgen har brug for information om det fjernede væv under en operation.
Hvis kirurgen for eksempel fjerner en tumor fra nyren, har han brug for information om vævets art under operationen. Han har brug for at vide, om tumoren allerede er fjernet fuldstændigt, eller om det ondartede væv ved marginalerne indikerer yderligere patologiske ændringer. Resultaterne af den hurtige sektionundersøgelse bestemmer operationens videre forløb. Vævsprøven fryses inden for ti minutter ved -20 ° C og stabiliseres. Et afsnit på 5 til 10 um fremstilles ved hjælp af et mikrotom, fastgjort til en glasplade som et objektglas og farvet. Resultaterne videresendes straks til operationsstuen, så kirurgen er i stand til at træffe en beslutning om det videre operation.
Diagnose & undersøgelsesmetoder
De vigtigste tekniske hjælpemidler inden for histologi er de forskellige farvningsmetoder. Histologien klassificerer cellestrukturerne i henhold til deres farvereaktion på det anvendte farvestof. Dette er biologiske pletter. Neutrofile cellestrukturer farves ikke af hverken sure eller basiske farvestoffer.
Ingredienserne er lipofile. Basofile cellestrukturer fungerer med basiske farvestoffer, såsom hæmatoxylin. Acidofile cellestrukturer er farvet af basiske og sure farvestoffer, såsom eosin, sur fuchsin og pikrinsyre. Andre cellestrukturer er nukleofile og argyrofile. Argyrofile cellestrukturer binder sølvioner, nukleofile DNA-bindinger og basiske farvestoffer. Hematoxylin-eosinfarvning (HE-farvning) bruges hyppigst som rutine- og oversigtsfarvning af computerstyrede farvningsmaskiner. Samtidig bruges specielle manuelle farvestoffer til individuelle spørgsmål.
Histokemiske undersøgelser præsenterer et komplekst billede af kemisk-fysiske processer med hensyn til elektroadsorption, diffusion (distribution) og grænsefladeadsorption i forbindelse med ladningsfordelingen i farvestofmolekylerne. Den ioniske binding skaber den største bindende kraft ved at binde sure farvestoffer til basiske proteiner. I histokemiske processer reagerer et farvestof på en vævskomponent. Enzymethistokemiske metoder forårsager farveudvikling gennem aktiviteten af cellens egne enzymer. Klassisk histoteknologi er blevet suppleret med immunhistokemi siden 1980'erne. Dette beviser celleegenskaber på basis af en antigen-antistofreaktion. Dette synliggøres ved hjælp af en flersnitsteknik baseret på farvereaktionen på stedet for antigenet (protein).
Hybridisering in situ blev opfundet et årti senere. Visse nukleotidsekvenser detekteres ved smeltning af dobbeltstrenget DNA og spontant docking af enkeltstrenge under anvendelse af RNA eller DNA. Nukleinsyresekvenserne vises ved anvendelse af sonder med fluorokrom-mærkning. Denne metode er kendt som fluorescens in situ hybridisering (FISH).
Vigtige farvningsmetoder er azan-farvning, preussisk blå reaktion, Golgi-farvning, gramfarvning og Giemsa-farvning. Disse farvningsmetoder fungerer med røde blodlegemer, rødlige cytoplasmaer, blå retikulære fibre og collagener, røde muskelfibre, påvisning af "trivalente jernioner", sølvfarvning af individuelle ioner, bakteriedifferentiering og differentiering af blodcellefarvning.
